Číslo publikace RU2183056C2 RU2183056C2 RU2000102740/13A RU2000102740A RU2183056C2 RU 2183056 C2 RU2183056 C2 RU 2183056RU 2 2000102740 13/2000102740 A RU 13/2000102740A RU 13 A RU2000102740 A RU 2000102740A RU 2000102740 C2183056 RU2 C2183056 RU Klíčové slovo autority 2 C2183056 RU2 Umění růst kultura hlívy ústřičné kultivace imunocytofytů Datum předchozího 2000-02-03 Číslo přihlášky RU2000102740/13A Jiné jazyky Angličtina ( en ) Jiné verze RU2000102740A ( ru Vynálezce O.A. Evdokimova R.V. Polskich A Maneshinovova V.E.V.V.V.V.V.V. Usacheva Původní pověřenec Voroněž Státní agrární univerzita pojmenovaná po K.D. Glinkovi Datum priority (Datum priority je předpoklad a není právním závěrem. Google neprovedl právní analýzu a neposkytuje žádné prohlášení ohledně přesnosti uvedeného data.) 2000-02-03 Přihlášení datum 2000-02-03 Datum zveřejnění 2002-06-10 2000-02-03 Přihláška podaná Voroněžskou státní agrární univerzitou pojmenovanou po. K.D. Glinka podal kritickou voroněžskou státní agrární univerzitu pojmenovanou po. K.D. Glinka 2000-02-03 Priorita RU2000102740/13A priorita Kritický patent/RU2183056C2/ru 2002-06-10 Udělena přihláška Kritický patent 2002-06-10 Publikace RU2183056C2 Veřejná publikace 2183056/2 Critical2002RU08 Critical vytvoření RU27 Publikace 2000102740A Kritický patent/RU2000102740A/ru

snímky

Abstraktní

Vynález se týká stimulace růstu kultury hlívy ústřičné a řeší problém zvýšení účinnosti způsobu pěstování hlívy ústřičné zkrácením doby kultivace a zvýšením adaptačních vlastností kultury. Toho se dosáhne zavedením imunocytofytu do živného média pro jejich kultivaci v koncentraci 5,2•10 -5 mg/ml účinné látky a stimulátor se zavede v počáteční fázi získávání inokula, konkrétně do agarové živiny. střední. 1 stůl

Popis

Vynález se týká růstového stimulátoru používaného ke zvýšení rychlosti růstu plodin hlívy ústřičné a zvýšení výnosu.

Jsou známy způsoby, jak zvýšit výnos hlívy ústřičné přidáním snadno dostupných zdrojů uhlíku a dusíku do substrátu, jako je melasa, otruby, krupice atd. (1).

Takové obohacení živného média však vede ke zvýšené pravděpodobnosti kontaminace substrátu konkurenční mikroflórou během procesu růstu.

Je známá metoda stimulace růstu hub, zejména žampionů (vybraných jako prototyp), přidáním přísady obsahující bílkoviny v koncentraci 10-50 g na 1 kg substrátu ve fázi jejich pěstování. V tomto případě se aditivum zavádí do substrátu s naklíčeným myceliem nebo se při výsevu smíchá se substrátem a sazenicemi žampionů (2).

Proteinové doplňky jsou doplňky výživy a nejsou konkrétními stimulátory růstu. Navíc přidání výživového doplňku ovlivňuje nejen houbové mycelium, ale i spory konkurentů, které jsou v substrátu přítomny.

Vynález řeší problém zvýšení účinnosti způsobu pěstování hlívy ústřičné zkrácením doby pěstování a zvýšením adaptačních vlastností plodiny. Tyto faktory jsou zásadní při získávání semenného materiálu pro kultivaci hlívy ústřičné, která zahrnuje 2 fáze: 1) kultivaci na živné půdě s agarizovanou mladinou, 2) kultivaci hlavního semene použitého v budoucnu na obilných zrnech (pšenice, žito, oves, ječmen). pro pěstování hlívy ústřičné v produkčních podmínkách. V procesu přenosu kultury z bohatého substrátu na chudý (z mladinového média na zrno a ze zrna na slámu) probíhá proces adaptace enzymatických systémů houby na nový substrát, který vyžaduje určitý čas. (lag period), a pokud je doba lag – period dlouhá, pak se zvyšuje pravděpodobnost infekce osiva konkurenční mikroflórou, jejíž spory mohou být přítomny v obilovinách a slámě.

Řešení tohoto problému je dosaženo tím, že při metodě stimulace růstu hlívy ústřičné, včetně zavádění růstového stimulantu do živného média pro jejich kultivaci, se tato používá jako imunocytofyt v koncentraci 5,2• 10-5 mg/ml účinné látky (AI) a stimulant se podává v počáteční fázi získávání semenného materiálu, konkrétně do agarového živného média.

Základem imunocytofytu je ethylester kyseliny arachidonové – podle ISO, jehož strukturní vzorec je C22Н36О2 (3).

Je známo, že producenty syntézy kyseliny arachidonové jsou houby třídy Phycomycetes. Přidání imunocytofytu do živného média semen (sladinový agar) v určité koncentraci vede jak ke zvýšení rychlosti růstu hlívy ústřičné na všech typech používaných substrátů (sladinový agar, zrno, sláma), tak ke zvýšení výnosu hlíva ústřičná.

Příklad 1. Kontrola 1. Kultura hlívy ústřičné (Pleurotus ostreatus) se pěstuje v Petriho misce na agarovém mladinovém médiu (4-8 % podle Ballinga), pH 7-7,5; při t= 25 o C. Jako inokulum se použije kousek agarového média s kulturou o poloměru 5 cm, který se umístí do středu Petriho misky s médiem. Kultura se inkubuje v termostatu, dokud povrch misky zcela nepřeroste. Doba kultivace je 11 dní (264 hodin), rychlost růstu je 0,45 cm/den.

ČTĚTE VÍCE
Kdo dělá technický plán domu?

Příklad 2. Experiment 1. Hlíva ústřičná se pěstuje za stejných podmínek jako kontrola (příklad 1), pouze se do agarového média přidá roztok imunocytofytů o koncentraci 5,2•10-2 mg/ml DV. Doba kultivace je 17 dní (408 hodin). Maximální poloměr znečištění je 4,5 cm, rychlost růstu je 0,26 cm/den. Můžeme tedy dojít k závěru, že růst kultury je inhibován.

Příklad 3. Experiment 2. Hlíva ústřičná se pěstuje za stejných podmínek jako kontrola (příklad 1), pouze se do agarového média přidá roztok imunocytofytů o koncentraci 5,2•10-11 mg/ml DV. Doba kultivace je 11 dní (264 hodin), rychlost růstu je 0,45 cm/den. Můžeme tedy konstatovat, že nedošlo k žádným významným změnám oproti kontrole.

Příklad 4. Experiment 3. Hlíva ústřičná byla pěstována za stejných podmínek jako kontrola (příklad 1), pouze roztok imunocytofytu v 5,2•10-5 mg/ml DV byl přidán do agarového média. Doba kultivace je 6 dní (144 hodin), rychlost růstu kultury je 0,83 cm/den.

Příklad 5. Kontrola 2. Získání mycelia zrna. Obilná zrna (pšenice, ječmen, žito, oves) se promyjí, uvaří, smíchají se sádrou a křídou a nasypou do skleněných lahví o objemu 0,5 litru. Výška vrstvy zrn je 19 cm Sterilizujte při 120 o C po dobu 1,5 hod. Po vychladnutí se zrno naočkuje semenem získaným v příkladu 1 (1/5 agarového povrchu šálku na láhev). Osivo zrna se pěstuje při t=22-25 o C. Kultivace se provádí do úplného přerůstání obsahu láhve. Doba kultivace je 18 dní (432 hodin), rychlost růstu je 1,06 cm/den.

Příklad 6. Experiment 4. Mycelium zrn se pěstuje za stejných podmínek jako v kontrole (příklad 5), pouze se použije kultura pěstovaná na agarovém mladinovém médiu s imunocytofytem v koncentraci 5,2•10-11 mg/ml DV. semenný materiál.. Doba kultivace – 18 dní (432 hodin), rychlost růstu – 1,06 cm/den.

Příklad 7. Experiment 5. Mycelium zrn se pěstuje za stejných podmínek jako v kontrole (příklad 5), pouze jako semenný materiál se použije kultura pěstovaná na agarovém mladinovém médiu s imunocytofytem v koncentraci 5,2 x 10-2 mg/ ml DV. Maximální výška znečištění je 13 cm, doba kultivace je 26 dní (624 hodin), rychlost růstu je 0,5 cm/den.

Příklad 8. Experiment 6. Mycelium zrn se pěstuje za stejných podmínek jako v kontrole (příklad 5), pouze jako semenný materiál se použije kultura pěstovaná na agarovém mladinovém médiu s imunocytofytem v koncentraci 5,2 x 10-5 mg/ ml DV. Doba kultivace – 13 dní (312 hodin), rychlost růstu – 1,46 cm/den.

Příklad 9. Kontrola 3. Semenný materiál se umístí na substrát (sláma, slupky slunečnice, oves). Přidejte křídu. Míchat. Osivo se přidává 3-5% objemu vlhkého substrátu. Substrát se semenem je umístěn ve standardním plastovém sáčku 401×00 cm. Výška substrátu v sáčku je 80 cm.Do sáčku se pomocí děrovačky udělají otvory o průměru 15-20 mm, které se umístí šachovnicově ve vzdálenosti 10-15 cm od sebe. Vlhkost podkladu 75%. Rychlost růstu před objevením se embryí je 2,76 cm/den. Doba kultivace je 29 dní (696 hodin). Při dodržení technologického postupu je při 10 kg substrátu sběr hub na jedno otočení 1,08 kg.

Příklad 10. Experiment 7. Materiál semen se pěstuje za stejných podmínek jako v příkladu 9, pouze v přítomnosti imunocytofytu v koncentraci 5,2-10-5 mg/ml DV. Rychlost růstu před objevením se embryí je 3,81 cm/den. Doba trvání – 21 dní (504 hodin). Za stejných podmínek při 10 kg substrátu je sklizeň hub na jedno otočení 1,37 kg.

Příklad 11. Experiment 8. Materiál semen se pěstuje za stejných podmínek jako v příkladu 9 v přítomnosti imunocytofytu v koncentraci 5,2-10-11 mg/ml DV. Rychlost růstu před objevením se embryí je 2,86 cm/den. Doba trvání – 28 dní (672 hodin). Za stejných podmínek při 10 kg substrátu je sběr hub na jedno otočení 1,05 kg.

ČTĚTE VÍCE
Je možné jíst dekorativní pomeranč?

Příklad 12. Experiment 9. Materiál semen se pěstuje za stejných podmínek jako v příkladu 9 v přítomnosti imunocytofytu v koncentraci 5,2-10-2 mg/ml DV. Rychlost růstu před objevením se embryí je 2,35 cm/den. Doba trvání 34 dní (816 hodin). Za stejných podmínek při 10 kg substrátu je sběr hub na jedno otočení 0,72 kg.

Výsledky jsou uvedeny v tabulce.
Zdroje informací
1. Patent Ruské federace 1697627, A 01 G 1/04, 15.12.92/46/XNUMX, Bull. XNUMX.
2. Patent Ruské federace 1731096, A 01 G 1/04, 07.05.92/17/XNUMX, Bull. XNUMX.

3. Kulnev A.I., Sokolova E.A. Víceúčelové stimulátory ochranných reakcí, růstu a vývoje rostlin. – Pushchino, 1997. – 18-22 s.

Nároky (1)

Způsob stimulace růstu kultury běžné havěti, včetně přípravy semenného materiálu na agarovém živném médiu v přítomnosti růstového stimulátoru, vyznačující se tím, že imunocytofyt se používá jako růstový stimulátor v koncentraci 5,2•10 -5 mg/ml.

RU2000102740/13A 2000-02-03 2000-02-03 Metoda stimulace růstu kultury hlívy ústřičné RU2183056C2 (ru)

Prioritní aplikace (1)

Číslo žádosti Důležité datum Datum podání Titul
RU2000102740/13A RU2183056C2 (ru) 2000-02-03 2000-02-03 Způsob stimulace růstu kultury hlívy ústřičné

Aplikace nárokující si prioritu (1)

Číslo žádosti Důležité datum Datum podání Titul
RU2000102740/13A RU2183056C2 (ru) 2000-02-03 2000-02-03 Způsob stimulace růstu kultury hlívy ústřičné

Publikace (2)

Číslo publikace Datum publikace
RU2183056C2 pravda RU2183056C2 (ru) 2002-06-10
RU2000102740A RU2000102740A (ru) 2002-08-27

ID = 20230199

Rodinné aplikace (1)

Číslo žádosti Titul Důležité datum Datum podání
RU2000102740/13A RU2183056C2 (ru) 2000-02-03 2000-02-03 Způsob stimulace růstu kultury hlívy ústřičné

Stav země (1)

Země Odkaz
RU (1) RU2183056C2 (ru)

Citováno (1)

* Citováno zkoušejícím, † Citováno třetí stranou

Číslo publikace Důležité datum Datum publikace postupník Titul
RU2446206C1 (ru) * 2010-10-21 2012-03-27 Státní vzdělávací instituce vyššího odborného vzdělávání “Tomská státní univerzita” (TSU) ZPŮSOB PĚSTOVÁNÍ MYCELIUM Ganoderma lucidum
  • 2000
    • 2000-02-03 RU RU2000102740/13A patent/RU2183056C2/ru neaktivní Ukončení práv k duševnímu vlastnictví

    Nepatentové citace (1)

    * Citováno zkoušejícím, † Citováno třetí stranou

    Titul
    Medveděv V.A. Hlíva ústřičná. Technologie pěstování. – M.: MP “Saturn”, 1993, s. 8-11. Dudka I.A. a další.Hlíva ústřičná. – Kyjev: Naukova Dumka, 1976, s. 46-51. *

    Citováno (1)

    * Citováno zkoušejícím, † Citováno třetí stranou

    Číslo publikace Důležité datum Datum publikace postupník Titul
    RU2446206C1 (ru) * 2010-10-21 2012-03-27 Státní vzdělávací instituce vyššího odborného vzdělávání “Tomská státní univerzita” (TSU) ZPŮSOB PĚSTOVÁNÍ MYCELIUM Ganoderma lucidum

    Podobné dokumenty

    Vydání Datum publikace Titul
    CN105474995A(zh) 2016-04-13 一种野生鸡枞菌的栽培驯化方法
    CN102204474B(zh) 2013-06-19 杏鲍菇的出菇方法
    CN108293592B(zh) 2022-09-23 一种利用高粱面混合料栽培金针菇的方法
    MX2008016208A(es) 2009-03-26 Sustrato y soporte para hongos mejorado.
    CN105981581B(zh) 2019-04-16 一种蝉花的人工培养方法
    CN104303830A(zh) 2015-01-28 一种杏鲍菇的种植方法
    CN107056394A(zh) 2017-08-18 一种真姬菇栽培的方法
    CN104303840B(zh) 2016-08-24 一种盘装金针菇的栽培方法
    CN108718915A(zh) 2018-11-02 的培养基及栽培方法
    CN109280632A(zh) 2019-01-29 一种液态发酵生产富硒杏鲍菇菌种的方法
    CN113303165A(zh) 2021-08-27 一种海鲜菇种植方法
    US5349121A (cs) 1994-09-20 Biologicky čistá kultura hub a způsob pěstování hub
    RU2183056C2 (ru) 2002-06-10 Způsob stimulace růstu kultury hlívy ústřičné
    KR100832352B1(ko) 2008-05-26 신균주 독청버섯아재비 및 이의 재배방법
    W2022100701A1(zh) 2022-05-19 一种罗伯茨虫草的培养方法
    JP3746440B2(ja) 2006-02-15 培用菌床およびキノコの栽培方法
    JP2000270675A(ja) 2000-10-03 マイタケ菌床人工栽培用栄養材
    CN108812063A(zh) 2018-11-16 一种采用合成基质制作双孢蘑菇栽培种的方法
    CN1276074C(zh) 2006-09-20 用于产生植物细胞分裂素的地衣芽孢杆菌及植物生长调节剂
    CN102835253A(zh) 2012-12-26 一种应用液体菌种工厂化生产真姬菇的优化工艺
    RU2658430C1 (ru) 2018-06-21 Způsob získání biologického produktu pro ošetření rostlin
    RU2291620C1 (ru) 2007-01-20 Metoda stimulace růstu a ochrany rostlin před chorobami
    JPH06178616A(ja) 1994-06-28 きのこ類の成長促進剤
    JP2683775B2(ja) 1997-12-03 工栽培法及びそれに使用する人工培養基
    RU2732832C1 (ru) 2020-09-23 Pěstování semenného mycelia houby Pleurotus ostreatus (hlíva ústřičná) pomocí syrových pivovarských zrn, odpadního produktu z pivovarnictví

    Právní události

    Datum účinnosti: 20050204

    Mnoho houbařů, kteří pěstují hlívu ústřičnou, sní o práci pouze během první vlny plodů. Navíc celý kultivační cyklus od výsevu mycelia do konce sklizně první vlny plodování je pouze 30-35 dní. S výnosem 20-25 % hmotnosti substrátu je tato varianta pěstování ekonomicky výhodná a realizovatelná.

    Ve skutečnosti však na mnoha farmách výnos v první vlně nepřesahuje 15 % a houbař je nucen sklízet úrodu ve druhé vlně plodování (cyklus se prodlužuje o 10 dní) a někdy v třetí vlna (cyklus se prodlouží o dalších 10 dní). Zvláště často při práci na zakoupeném substrátu vznikají problémy s výnosem a kvalitou houby.
    Pěstování hlívy ústřičné vypadá na první pohled jednoduše. Pro získání dobré a hlavně stabilní úrody je nutné udržovat optimální hodnotu četných technologických parametrů při přípravě substrátu, inkubaci a plodování. Pokud přesně „trefíme“ optimum, dostaneme fantastickou úrodu a vzpomínka na to nedá houbaři dlouho klidný spánek. Skutečný život však dává vše na své místo a ta jedna superpoddajná vlna zůstává pouze ve snech.
    Jaké faktory nám neumožňují získat vysoký výnos? Zkusme na to přijít.

    Nutriční vlastnosti substrátu:
    Výchozí suroviny pro substrát musí být nejen kvalitní (suché, zbavené nečistot apod.), ale také musí obsahovat dostatečné množství základních makroživin (dusík, fosfor, draslík) a mikroprvků.
    Hlavní surovina (sláma) má nedostatek dusíku a fosforu. Předběžná chemická analýza surovin je nezbytná pro úpravu úrovně těchto prvků a pro pochopení potenciálních schopností daného substrátu.
    Přidání zdrojů rostlinných bílkovin, jako je luštěninová sláma, otruby, sójová moučka nebo komerční přípravky ze sójové moučky, poskytuje houbovému myceliu dostupnou bílkovinnou a sacharidovou výživu.
    Pro dobrou úrodu stačí mít v substrátu 0,7-0,8 % dusíku. Nadbytek dusíku může mít negativní dopad na výnos a kvalitu hub. Pokud je doplněk výživy (zdroj dusíku) špatně promíchán, vytvoří se oblasti s velkým přebytkem bílkovin. Když je tento protein rozkládán mikroorganismy, uvolňuje se ze substrátu přebytek amoniakálního dusíku. Mycelium hlívy ústřičné však nesnáší ani malou koncentraci amonných iontů v substrátu. Houby rostoucí na takovém substrátu mají nepřirozenou nažloutlou barvu a černé skvrny, které se tvoří v místech, kde buňky odumírají toxickým účinkem amonných iontů.
    Pro dosažení vysokého výnosu v první vlně plodování musí substrát obsahovat dostatečné množství relativně snadno dostupných bílkovin a sacharidů. K tomu používáme jako přísadu luštěninovou slámu. Obilná sláma může také někdy obsahovat poměrně vysoké hladiny dusíku. Tento dusík je však obtížně dostupný a houba jej absorbuje po dlouhou dobu během tří až čtyř vln plodování. Substrát založený pouze na slámě obilných plodin nám zpravidla neumožňuje získat požadovaný výnos v jedné nebo dvou vlnách plodování.

    Příprava podkladu:
    Na rozdíl od žampionu byl nejvyšší výnos hlívy ústřičné pozorován na sterilním substrátu. Průmyslové sterilní technologie pro přípravu substrátu hlívy ústřičné jsou však implementovány pouze v zemích jihovýchodní Asie (Japonsko, Jižní Korea, Čína). Semisterilní technologie pro přípravu substrátů v substrátových strojích se v poslední době v Rusku značně rozšířila. Suché nebo částečně navlhčené suroviny zpracováváme párou o teplotě cca 100°C po dobu 1-2 hodin. Většina kompetitivní mikroflóry je během tohoto ošetření zabita nebo se stane neaktivní. Když se stroj otáčí, jsou složky substrátu dobře promíchány a rovnoměrně navlhčeny. Úrovně vlhkosti a teploty zpracování lze poměrně dobře kontrolovat.
    Po tepelném zpracování se substrát vyloží ze stroje na podlahu nebo na pracovní stoly, kde se provádí očkování ručně pod širým nebem. To je nejslabší místo této technologie. Selektivita substrátu je nízká a jakákoliv vnější infekce, vstupující do substrátu, má šanci se v něm usadit. V teprve začínajících podnicích, kdy je infekční pozadí stále velmi nízké, není pozorována kontaminace substrátu konkurenčními plísněmi a výnos hlívy ústřičné je tak vysoký, že optimismus houbaře nezná mezí.
    Postupem času, někdy i docela rychle, však infekční pozadí v podniku naroste na kritickou úroveň, průměrný výnos výrazně klesá a není možné jej žádným způsobem zvyšovat. Pouze dobře organizovaný čistý prostor s hygienickou kontrolou pro personál a přívodem filtrovaného vzduchu umožňuje stabilní provoz této technologie.
    Systém filtrace vzduchu obsahuje hrubý předfiltr a jemný vzduchový filtr.
    Uspořádání substrátové dílny v oddělené místnosti, oddělené od plodových komor, jakož i od inkubačních komor, může výrazně snížit rychlost akumulace infekčního pozadí v inokulační zóně.
    Prodloužení doby tepelného zpracování v substrátovém stroji nad rámec normy vede k úplné sterilizaci části substrátu a rozvoji typické indikátorové plísně na takovém substrátu – oranžové neurospory. Ztráta výnosu v blocích infikovaných Neurosporou je samozřejmě zaručena.

    Kvalita mycelia:
    Pro semisterilní technologii je velmi důležité používat kvalitní sterilní mycelium. Některé farmy využívající vlastní mycelium vyrobené ve špatně vybavených laboratořích neustále dostávají velké množství substrátových bloků infikovaných různými plísněmi. Pokud však do stejného substrátu vyséváme kvalitní podhoubí, pak v dávce kupodivu nenajdeme jediný zasažený blok. Špatné mycelium není nutně zdrojem infekce, ale slouží jako výborný „projevující se“ materiál pro infekci ukrytou v substrátu. V nesterilním substrátu podhoubí konkurují hlívě ústřičné vždy mikroflórě substrátu. Vysoce kvalitní mycelium rychle kolonizuje substrát a potlačuje všechny konkurenty. Nekvalitní mycelium slouží jako výborný, snadno dostupný nutriční základ pro rozvoj konkurenční mikroflóry.
    Výsevek mycelia je kompromisem mezi náklady a technologickými požadavky. U domácího mycelia vyrobeného na velkých zrnech se obvyklá výsevná dávka pohybuje v rozmezí 3–5 % hmotnosti substrátu. U mycelia Sylvan, vyrobeného z malých zrn prosa, je výsevek 1,3 – 1,8 %. Pro rychlé znečištění substrátu je velmi důležité rovnoměrné rozložení mycelia v hmotě substrátu, zvláště při nízkém výsevu.
    Produktivita samozřejmě souvisí s kvalitou podhoubí a do určité míry s výsevem, ale stále je určována především nutriční hodnotou substrátu.
    Velikost a hustota substrátových bloků
    U různých druhů exotických hub byl zřetelně zaznamenán nárůst specifického výnosu na jednotku hmotnosti substrátu s poklesem hmotnosti bloku. Například specifická výtěžnost bloku substrátu o hmotnosti 3-4 kg může být o 30-50 % vyšší než výtěžnost brikety o hmotnosti 18-20 kg. V Evropě však stále volili technologii s velkými briketami, protože je produktivnější a ekonomičtější z hlediska ruční práce. V Rusku také raději pracují na poměrně velkých blocích. Ve firmě Brig u Moskvy nejprve vyrobili bloky o hmotnosti 13 kg a z první vlny dostali 1,6 – 1,8 kg hub na blok. Poté byly lisovací stroje přepracovány a začaly se vyrábět bloky menšího průměru o hmotnosti 11 kg. Výnos na blok však zůstal na stejné úrovni.
    Optimální hustota substrátu je vázána na hmotnost bloku. Čím masivnější blok, tím nižší musí být hustota substrátu, aby bylo zajištěno dostatečné provzdušnění uvnitř bloku. U velkých briket je optimální hustota 0,4 – 0,45 kg/l, u malých bloků lze hustotu zvýšit na 0,5-0,6 kg/l.
    V zemědělském závodě Moskovsky zkoušeli tvarovat bloky na hydraulickém lisu. Fermentovaný substrát z tunelů měl dosti vysokou vlhkost (72-74 %) a sláma během dlouhého procesu fermentace a pasterizace značně změkla. Výsledkem je, že formovač bloků produkoval vysoce stlačenou hmotu substrátu, ve které mycelium nerostlo dobře. Ruční balení naopak poskytlo vynikající výsledky, protože v relativně sypkém substrátu byly vytvořeny optimální podmínky provzdušňování. Výzkum německých mykologů ukázal, že při stejné nutriční hodnotě substrátu zlepšené provzdušňování zvýšilo výnos o 30 % díky mohutnějšímu rozvoji mycelia uvnitř bloku substrátu.
    Na menších blocích se zvyšuje nejen měrná výtěžnost, ale i výtěžnost. Například na blocích o hmotnosti 10-12 kg za 60 dní se získá stejný výnos jako u briket o hmotnosti 20-22 kg za 90 dní.

    Inkubace:
    V inkubační době se zaměřujeme na udržení teploty v substrátu, která je optimální pro rozvoj mycelia hlívy ústřičné (28-30°C).
    Když se substrát přehřeje, mycelium přestane růst a odumře. V místech přehřátí se tvoří tmavé zóny neporostlé myceliem, k tomu často dochází při kontaktu bloků nebo briket během inkubační doby. V přehřátých zónách se následně může objevit hnojník.
    Když je teplota substrátu výrazně nižší než optimální, mycelium hlívy ústřičné se vyvíjí pomalu a konkurenční organismy zvládnou převzít určité zóny. Výsledkem je „flekatý“ blok, ve kterém se zóny porostlé myceliem střídají s tmavými zónami, kde se tvoří různé plísně. To se děje jak na semisterilních, tak na fermentovaných substrátech.
    V inkubační době udržujeme mírnou vzdušnou vlhkost (50-70%), aby se perforacemi mohla znehodnotit přebytečná voda vzniklá při rozkladu substrátu houbovým myceliem. U velkých briket se uvolňuje tolik vody, že perforace jsou doslova zaplaveny vodou. V takových perforacích již nebude docházet k tvorbě plodů.
    Délka inkubace je určena různými faktory. Čím více mycelia je přidáno, tím rychleji substrát přerůstá a vyzrává.
    Zrání substrátu většinou určujeme podle výskytu signalizačních houbových primordií.

    Plod:
    Tvorba plodů je nejzajímavější a zároveň málo prozkoumaný aspekt pěstování hlívy ústřičné. Je poměrně obtížné získat synchronní iniciaci houbových primordií pro celou dávku substrátu, protože každý blok přerůstá jinak v závislosti na množství mycelia, které se dostalo do substrátu, jeho distribuci atd.
    Jasnou synchronizaci jsem pozoroval na substrátu připraveném v tunelu, kdy byl substrát naložen ve formě lůžka na police žampionu. V tomto případě celá postel funguje jako jeden organismus. Poté, co se v komoře objevila první signální primordia hub, začalo pomalé ochlazování. Substrát byl chlazen po dobu tří dnů mírným přívodem čerstvého vzduchu a vysokou relativní vlhkostí. Na konci chladícího období byly všechny perforace vyplněny primordií hlívy ústřičné. Plodová vlna byla shromážděna během 3-4 dnů.
    Při práci s velkou dávkou substrátu, skládající se z mnoha jednotlivých bloků, nejsme schopni dosáhnout takové celkové synchronizace. Některé bloky rychleji zarůstají myceliem a jako první tvoří primordia. Zaměříme se na to a začneme chladit. Druhá část bloků však ještě není zralá a proces chlazení pouze zpomaluje proces zrání. V důsledku toho získáme prodlouženou vlnu plodů, která někdy trvá 10-14 dní nebo více.
    Příliš brzké zahájení tvorby plodů může být důsledkem porušení klimatických parametrů v inkubační komoře, například prudkého poklesu teploty nebo průvanu. Časné plodování na neúplně inkubovaném substrátu má obvykle za následek slabou první vlnu plodování. Snižuje se i kvalita hub. Obdobná situace nastává při přepravě částečně inkubovaného substrátu (12-14 dní). Změny teploty a samotná přeprava narušují normální proces blokového zrání a tvorby plodů. V případě transportu naočkovaného substrátu a jeho pěstování na místě (osvědčená možnost pro fermentovaný substrát z tunelů) je proces tvorby plodů efektivní. Toto schéma se používá v Evropě. Pokud jde o polosterilní substrát, nelze jej transportovat, pokud bloky nejsou zcela kolonizovány myceliem, protože existuje velké nebezpečí rozvoje konkurenční mikroflóry.

    Plod:
    Klimatické podmínky v plodišti mají významný vliv na výnos a kvalitu hub. Nedostatečně výkonné větrání neumožňuje odstranění přebytečného oxidu uhličitého a houby ošklivě rostou s dlouhými stonky. Slabé proudění vzduchu s vysokou relativní vlhkostí klobouků a ve velkém trsu hlívy ústřičné se vyvíjejí pouze jednotlivé klobouky.
    Nadměrná vlhkost, zejména u technologie „zavlažování“, „ničí“ vynikající porosty hlívy ústřičné. Nedostatečné zvlhčení vzduchu a silné proudy suchého vzduchu houby vysušují a mění jejich klobouky v „krokodýlí kůži“.
    Všechny výše uvedené zjevné odchylky od optimálních parametrů značně snižují výnos. Mohou také existovat méně zřejmé odchylky, které také vedou ke ztrátě výnosu. Například systém zvlhčování vzduchu v komoře je o něco méně než optimální a houbař dostává zjevně dobré houby s vlhkostí 87%. Výtěžnost v první vlně je 10 % hmotnosti substrátu. Pokud by systém zvlhčování vzduchu zajistil výnos hub s vlhkostí 91 % (standardní vlhkost plodnic hlívy ústřičné je 91-92 %), pak by výnos ze stejného substrátu dosáhl v první vlně 14.4 %!
    Na úrodu má vliv i velikost nasbíraných hub. V Itálii a Španělsku se pěstují velmi velké houby s klobouky o průměru až 15-18 cm.
    Zvlhčování vzduchu pomocí vysokotlakých trysek umožňuje pěstovat velké houby bez ztráty jejich kvalitativních vlastností. Výnos je odpovídajícím způsobem vysoký. V Rusku preferují houby se středně velkými klobouky (4-7 cm). Při sklizni menších hub může výnosnost poměrně výrazně klesnout.
    Plísňové mouchy a komáři mohou způsobit značné škody na plodinách hlívy ústřičné. Když larvy much poškodí mycelium v ​​plodové zóně, sklizeň je částečně nebo úplně ztracena. Pokud se při balení pod fólii zachytí mouchy, mohou bdělí vedoucí prodejen vrátit celou várku hub zpět. A to jsou slušné ztráty.

    Změna odrůdy:
    Naši zkušenější zahraniční kolegové zaznamenali pokles výnosu při dlouhodobém pěstování stejné odrůdy hlívy ústřičné. Mechanismus tohoto jevu není dosud znám. Po sobě jdoucí pěstování dvou nebo tří odrůd po celý rok umožňuje získat trvale vysoký výnos.

    závěr:
    Všichni pěstitelé hub někdy dosahují vysokého výnosu. Ale pro úspěšné podnikání je potřeba takové úrody získávat důsledně nejen po celý rok, ale i po mnoho a mnoho let. K tomu potřebujete mít farmu s dobrým vybavením, které by vám umožnilo udržet optimální parametry ve všech fázích pěstování. Role samotného houbaře stále zůstává hlavní a spočívá v neustálém sledování jak technologických parametrů, tak pracovního personálu.

    ČTĚTE VÍCE
    Jací paraziti žijí ve vepřovém mase?